УДК 636 : 576.8.07 : 006.354 Группа С79
ГОСУДАРСТВЕННЫЙ СТАНДАРТ СОЮЗА ССР
ПТИЦА СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННАЯ
Методы лабораторной диагностики инфекционного ларинготрахеита
Agricultural poultry.
Methods of laboratory diagnostics of infectious laringotracheitis
ГОСТ
25582-83
(СТ СЭВ 1743—79J
Постановлением Государственного комитета СССР по стандартам от 6 января 1982 г. № 17 срок действия установлен
с 01.07.83 до 01.07.88
Несоблюдение стандарта преследуется по закону
Настоящий стандарт распространяется на кур и фазанов и устанавливает методы лабораторной диагностики инфекционного ларинготрахеита.
Стандарт применяют при диагностировании заболевания птицы в лабораториях ветеринарных научно-исследовательских учреждений.
Стандарт полностью соответствует СТ СЭВ 1743—79.
1. МЕТОДЫ ОТБОРА ПРОБ
1.1. Для вирусологического исследования берут пробы патологического материала — часть слизистой оболочки гортани, трахеи, конъюктивы, носовых ходов (включая экссудаты) и легких от только что павших или убитых с диагностической целью птиц в начальной фазе их заболевания — на 2—7 сут.
Отобранные пробы замораживают и до проведения исследований сохраняют при температуре минус 20°С и ниже.
1.2. Для серологического исследования берут на 14 и 28 сут от начала болезни кровь по 5 см3 не менее чем от пяти голов птицы. Отделяют сыворотку крови и до начала исследований сохраняют ее (не добавляя консервантов) в замороженном состоянии при температуре минус 20°С и ниже.
Перепечатка воспрещена
9
Издание официальное
2. МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ
2.1. Метод выделения вируса
Сущность метода заключается в выделении возбудителя заболевания на куриных эмбрионах или на культуре клеток.
2.1.1. Аппаратура и материалы
Для проведения исследования применяют:
термостат или инкубатор вакуумный с температурой нагрева 37—38°С;
ступки фарфоровые;
центрифугу лабораторную с частотой вращения 3000— 5000 об/мин;
измельчитель ткани;
пробирки стеклянные по ГОСТ 25336—82;
флаконы;
термометр;
шприцы с иглами;
пенициллин;
стрептомицин;
эмбрионы куриные 9—12-суточного возраста; культуру клеток почек куриных эмбрионов и цыплят; гидролизат лактальбумина 0,5% в растворе Хенкса.
2.1.2. Подготовка к исследованию
Пробы патологического материала, взятые для выделения вируса, гомогенизируют в изотоническом буферном растворе в концентрации 1:5с помощью измельчителя ткани или в ступке с кварцевым стеклом. Смесь центрифугируют с частотой вращения 1500—2000 об/мин в течение 10—15 мин. Надосадочную жидкость сливают, добавляют по 1000 ЕД пенициллина и стрептомицина на 1 см3 суспензии и выдерживают в течение 3—12 ч пои 2—4°С.
2.1.3. Проведение исследования
При выделении вируса на куриных эмбрионах для каждой пробы используют по 10 куриных эмбрионов. Полученную после обработки пробы суспензию инокулируют на хориоаллантоисную оболочку или в хориоаллантоисную полость в количестве 0,1 — 0,2 см3. Зараженные эмбрионы одновременно с контрольными инкубируют при температуре 37°С в течение 8 сут. Эмбрионы овос-копируют не реже чем один раз в сутки. Эмбрионы, погибшие в первые 24 ч, отбрасывают, а эмбрионы, погибшие позже, удаляют и сохраняют в холодильнике при температуре 4°С. Оставшиеся живые эмбрионы убивают на 6—8 сут после инокулирования охлаждением в течение 2—3 ч при 4°С.
2.1.4. Обработка результатов
2.1.4.1. Гибель эмбрионов в течение 4—6 сут свидетельствует о наличии вирулентного штамма вируса инфекционного ларин-готрахеита. Гибель эмбрионов позднее указанных сроков или отставание эмбрионов в развитии по размерам и массе свидетельствует о заражении более мягкими штаммами вируса.
2.1.4.2. Для выявления специфических поражений куриного эмбриона проводят дополнительно 2—3 пассажа.
Для последующего пассажа вируса используют для заражения хориоаллантоисную оболочку, суспензированную в аллантоисной жидкости, и весь эмбрион.
Специфические поражения куриных эмбрионов, погибших через 3—5 сут после заражения, характеризуются: помутнением и утолщением хориоаллантоисной оболочки, наличием мелких (мелкозернистые, величиной 1—4 мм) или крупных (диаметром 5—7 мм) бляшек от серого до желто-белесого цвета различной морфологии — круглые, плоские или неправильной формы.
2.1.4.3. Выделение вируса подтверждают установлением внутриклеточных включений (телец Зейфрида), реакцией нейтрализации, реакцией диффузионной преципитации в агаровом геле или бкопробой. Идентификацию вируса проводят также методом иммунофлуоресценции и электронной микроскопии.
2.1.4.4. При заражении вирусом инфекционного ларинготра-хеита культуры клеток почек куриных эмбрионов и цыплят цито-патический эффект появляется на 4—6 сут после инокулирова-ния. Наблюдают множество многоядерных поликариоцитов. Под микроскопом обнаруживают внутриядерные включения. Специфичность этих изменений доказывают иммунофлуоресценцией или С помощью специфических сывороток в реакции нейтрализации.
2.2. Метод постановки биопробы
Сущность метода заключается в воспроизведении инфекционного ларинготрахеита на цыплятах. Метод позволяет определить вирулентность штамма, а также провести дифференциацию его от вирусов, вызывающих сходное поражение хориоаллантоисной оболочки у инфицированных куриных эмбрионов.
2.2.1. Аппаратура и материалы
Для проведения исследования применяют аппаратуру и материалы, указанные в п. 2.1.1, и дополнительно:
пипетки пастеровские.
2.2.2. Проведение исследования
Биопробу ставят на цыплятах 1—2,5-месячного возраста путем внутритрахеальной аппликации вируссодержащего материала и втирания его в слизистую оболочку клоаки.
За выжившими цыплятами наблюдают в течение 10—14 сут.
Для исключения вируса оспы кур, вызывающего на хорио-аллантоисной оболочке поражения, сходные с вирусом инфекционного ларинготрахеита, заражают цыплят 30—60-суточного возраста методом аппликации вируссодержащего материала в скарифицированные перьевые фолликулы голени, гребешок и гортань.
2.2.3. Обработка результатов
Инфекционный ларинготрахеит диагносцируют при появлении у зараженных цыплят на 3—7 сут, но не позднее 12 сут клинических признаков: кашля, хрипов, поражений гортани, ринита.
У птиц, зараженных клоачно, наблюдается воспаление слизистой оболочки. Некоторые более мягкие штаммы, даже и в больших дозах, вызывают только хрипы и истечения из носа. Оспенная реакция у зараженной птицы проявляется на 6—8 сут в форме припухания и покраснения фолликул и образования ложных дифтеритических наложений в ротовой полости. При вирусоскопии по Морозову в мазках из развившихся фолликул обычно обнаруживают оспенные элементарные тельца.
2.3. Серологический метод
Сущность метода заключается в выявлении у птиц специфических антител в реакции нейтрализации (PH).
2.3.1. Аппаратура, материалы, реактивы и питательные среды
Для проведения исследования применяют: баню водяную;
термостат с температурой нагрева 37—38°С; холодильник с морозильной камерой; штативы;
горелки газовые или спиртовые; пробирки бактериологические; пробки резиновые;
пипетки градуированные вместимостью 1, 2, 5, 10 и 100 см3 по ГОСТ 20292—74;
измельчитель ткани; потенциометр;
чашки Петри по ГОСТ 25336—82; стекла предметные по ГОСТ 9284—75; натрий хлористый по ГОСТ 4233—77; воду дистиллированную по ГОСТ 6709—72; пенициллин; стрептомицин;
эмбрионы куриные 9—12-суточного возраста; культуру клеток почек куриных эмбрионов и цыплят; среды питательные для культуры клеток.
2.3.2. Подготовка к исследованию
2.3.2.1. Антиген для проведения реакции нейтрализации готовят из хориоаллантоисной оболочки куриных эмбрионов с характерными для данного вируса изменениями. Хориоаллантоисную оболочку гомогенизируют с равным количеством буферного изотонического раствора с pH от 7,2 до 7,4, к которому добавлены антибиотики из расчета по 100 ЕД пенициллина и стрептомицина на 1 см3 раствора.
Суспензию центрифугируют в течение 10 мин с частотой вращения 1500—2000 об/мин.
Надосадочную жидкость сливают и используют в качестве антигена, если она содержит вируса не менее 105 Е1Д 50/см3. До употребления антиген сохраняют в запаянных ампулах в замороженном состоянии.
2.3.2.2. Сыворотки (больных и переболевших птиц, контрольные положительные и отрицательные сыворотки птиц) инактивируют в водяной бане при температуре 56°С в течение 30 мин и до начала исследования сохраняют также в замороженном состоянии.
2.3.3. Проведение исследования
Реакцию нейтрализации проводят на куриных эмбрионах или на культурах клеток, используя постоянные количества сыворотки и прогрессивно нарастающие 10-кратные разведения вируса-антигена.
Реакция нейтрализации проводится в соответствии с таблицей.
Нормальная | И ммунная | Разведение вируса | ||||||
Номер | Номер | |||||||
ряда | пробирки | сыворотка, см3 | сыворотка, см* | 1:5 | 1:50 | 1:500 | 1:5000 | 1:50000 |
1 | 0,5 | 0,5 | _ | |||||
1 | 2 | 0,5 | — | — | 0,5 | — | — | — |
3 | 0,5 | — | — | — | 0,5 | — | — | |
4 | 0,5 | — | — | — | — | 0,5 | — | |
5 | 0,5 | — | — | — | — | — | 0,5 | |
1 | 0,5 | 0,5 | ||||||
о | 2 | — | 0,5 | — | 0,5 | — | — | — |
2 | 3 | — | 0,5 | — | — | 0,5 | — | — |
4 | — | 0,5 | — | — | — | 0,5 | — | |
5 | — | 0,5 | — | — | — | — | 0,5 |
В штатив ставят несколько рядов стерильных пробирок. Число рядов соответствует числу испытуемых сывороток, а число пробирок в ряду — числу разведений вирусного антигена. Во все пробирки из ряда вносят по 0,5 см3 соответствующей сыворотки. Параллельно с этим ставят контрольный опыт с нормальной (известной отрицательной) и иммунной (известной положительной) сы
воротками против инфекционного ларинготрахеита в этой же дозе. Затем во все пробирки с испытуемыми и контрольными сыворотками добавляют одинаковое количество (0,5 см3) соответствующих 10-кратных разведений вирусного антигена. Антиген можно разливать одной и той же пипеткой, если начать с самого большого разведения. Пробирки встряхивают энергично и оставляют при комнатной температуре в течение суток.
Каждым разведением инокулируют по 4—5 эмбрионов (или 4— 5 пробирок культуры клеток) путем инокуляции на хориоаллан-тоисной оболочке или в хориоаллантоисную полость в количестве 0,2 см3.
Эмбрионы инкубируют при температуре 37°С на протяжении суток, проводя овоскопию ежедневно не менее одного раза. Погибшие в первые 24 ч эмбрионы отбрасывают, а остальные вскрывают на 6 сут для выявления специфических изменений на поверхности хориоаллантоисной оболочки.
В реакции нейтрализации используются неразведенные сыворотки, так как могут возникнуть некоторые нежелательные различия между нейтрализационными индексами одной и той же сыворотки, использованной в разведенном и неразведенном состоянии. При недостаточном количестве сыворотки ее разводят до необходимого минимума (1 : 2, 1 : 3 и т. д.). В этом случае полученный индекс нейтрализации умножают на соответствующий фактор разведения (1:2, 1 :3 и т. д.).
2.3.4. Обработка результатов
2.3.4.1. Эмбриональную инфекционную дозу 50% (или инфекционную дозу 50% в культурах тканей) вычисляют отдельно для каждой сыворотки на основании полученных результатов реакции нейтрализации. Индекс нейтрализации представляет разность между логарифмическими показателями титров вируса в присутствии нормальной (отрицательной) и иммунной (положительной) сывороток, подсчитанную по Риду и Менчу. Найденное по таблице антилогарифмов число будет являться индексом нейтрализации.
2.3.4.2. Вирусный изолят, который нейтрализуется положительной сывороткой против инфекционного ларинготрахеита с индексом выше 50, индентифицируют как вирус инфекционного ларинготрахеита.
Сыворотку с индексом нейтрализации 10 или меньше в реакции нейтрализации с известным штаммом вируса инфекционного ларинготрахеита считают отрицательной, сыворотку с индексом 11—49 — сомнительной, с индексом 50 и выше — положительной.
2.4. Метод флуоресцирующих антител
Сущность метода заключается в обнаружении вирусного антигена при помощи специфической иммунофлуоресцентной сыворот-
ки, в мазках из слизистой оболочки трахеи или конъюктивы птиц в ранней острой фазе болезни, в хориоаллантоисной оболочке и инфицированных культурах клеток.
2.4.1. Аппаратура, реактивы и материалы Для проведения исследования применяют: микроскоп люминесцентный; термостат;
стекла предметные по ГОСТ 9284—75; кюветы металлические;
натрий хлористый по ГОСТ 4233—77, 0,85%-ный раствор; ацетон по ГОСТ 2603—79;
раствор фосфатно-буферный 0,01 М концентрации pH 7,2—7,4, содержащий 0,85% хлористого натрия;
масло иммерсионное нелюминесцирующее; сыворотку флуоресцирующую.
2.4.2. Проведение исследования
Мазки-отпечатки, приготовленные на предметном стекле из пораженной хориоаллантоисной оболочки куриного эмбриона, слизистой трахеи, конъюктивы больной птицы, а также культуры клеток, выращенной на стекле, подсушивают на воздухе, споласкивают физиологическим раствором и выдерживают в ацетоне при 4°С в течение 10 мин. Препараты укладывают на увлажненное дно кюветы и наносят на каждый препарат по 0,5 см3 рабочего разведения флуоресцирующей сыворотки.
В качестве контрольной используют для окрашивания препаратов нормальную флуоресцирующую сыворотку. Кювету закрывают крышкой и выдерживают 30 мин в термостате при 37°С. Окрашенные препараты промывают в течение 2 ч в проточной водопроводной воде.
Подсушенные препараты просматривают под люминесцентным микроскопом с иммерсионным объективом.
Результат оценивают в зависимости от степени свечения и числа флуоресцирующих клеток.
2.4.3. Обработка результатов
У больной птицы в период острого течения болезни в мазках наблюдается свечение антител.
15
Изменение № 1 ГОСТ 25582—83 Птица сельскохозяйственная. Методы лабораторной диагностики инфекционного ларннготрахеита
Утверждено н введено в действие Постановлением Государственного комитета СССР по стандартам от 17.03.88 № 590
Дата введения 01.07.88
Под наименованием стандарта проставить код: ОКСТУ 9809.
По всему тексту стандарта заменить единицу: об/мин на мин-1.
Пункт 2.1.2. Заменить слова и значения: «изотоническом буферном» на «физиологическом», 3—12 ч на 1—2 ч;
дополнить словами: «Проводят контроль надосадочной жидкости на стерильность с использованием питательных сред мясопептонного бульона (МПБ), мясопептонного агара (МПА), мясопептонного печеночного бульона под вазелиновым маслом (МППБ), агара Сзбуро».
(Продолжение см. с. 350)
Пункт 2.1.3. Заменить значение: 8 сут на 6 сут.
Пункт 2.1.4.1. Исключить слова: «Гибель эмбрионов позднее указанных сроков или отставание эмбрионов в развитии по размерам и массе свидетельствует о зчзажении более мягкими штаммами вируса».
Пункт 2.1.4.3 изложить в новой редакции: «2.1.4.3. Выделение вируса под-~5с;ждают реакцией нейтрализации и биопробой».
Пункт 2.3.2.1. Заменить слова; «буферного изотонического» на «физиологи* веского».
Пункт 2.3.3. Пятый абзац. Заменить слово: «суток» на 6 сут.
Пункты 2.4—2.4.3 исключить.
(ИУС No 6 198$ г.)